Las secciones congeladas generalmente no requieren recuperación de antígenos, mientras que las secciones en parafina sí. Actualmente, las muestras rutinarias de cortes en parafina generalmente se fijan con formaldehído. De hecho, la sensibilidad de los marcadores inmunohistoquímicos en algunas células tisulares fijadas con formaldehído se reduce significativamente. Las razones son: (1) se forman enlaces aldehído durante el proceso de fijación del formaldehído y se bloquean algunos determinantes antigénicos (2) se utiliza formaldehído durante el proceso. proceso de conservación. Se formarán grupos carboximetilo en la proteína y se bloquearán los determinantes antigénicos. (3) Cuando se fija con un fijador, se producirá entrecruzamiento entre las proteínas y los determinantes antigénicos también pueden bloquearse; Por lo tanto, para obtener buenos resultados de tinción durante la tinción, algunos antígenos deben repararse con anticipación. Para las secciones congeladas, la acetona o el formaldehído son mejores para la fijación. Debido a que se está reparando con PFA al 4 %, aún debe considerar la recuperación de antígenos. Existen muchos métodos para reparar antígenos. Los métodos de reparación de antígenos más utilizados incluyen el método de reparación por microondas, el método de calentamiento a alta presión, el método de digestión enzimática, el método de calentamiento por ebullición, etc. La solución de reparación comúnmente utilizada es un tampón de citrato de 0,01 mol/L con pH 6,0. . Algunas personas también utilizan agua destilada para reparar antígenos. El método es el siguiente: poner las rodajas lavadas con agua desparafinada en un recipiente lleno de agua destilada, meterlo en el microondas y hervir durante 5 minutos a fuego medio-bajo. mantener el estado de ebullición a fuego medio-bajo durante 10 minutos.