El experimento 1 observa la distribución de ADN y ARN en las células.
Principio experimental: ADN verde metilo, ARN rojo piro.
Distribución: El ADN eucariota se distribuye principalmente en el núcleo, con una pequeña cantidad de ADN también contenida en las mitocondrias y los cloroplastos; el ARN se distribuye principalmente en el citoplasma.
Los resultados muestran que el núcleo es verde y el citoplasma es rojo.
Identificación de sustancias del Experimento 2
Reactivo de Fehling de azúcar reductor ~ Precipitado rojo ladrillo
Rojo gordo de Sudán tres ~ Naranja
Rojo gordo de Sudán cuatro ~Rojo
Reactivo de proteína Biuret~Reacción púrpura
1 y detección de azúcar reductor
(1) Selección de material: alto contenido de azúcar reductor, blanco o casi blanco , como manzanas, peras y rábanos blancos.
(2) Reactivos: reactivo de filina utilizado actualmente (solución A: solución de NaOH de 0,1 g/ml, solución B: solución de CuSO4 de 0,05 g/ml).
(3) Pasos: Ponga 2 mL de solución de muestreo en el tubo de ensayo → Agregue 1 mL de reactivo Congo recién preparado (mezcle los reactivos Congo A y B en cantidades iguales antes de agregarlos) → Caliente en un baño de agua durante aproximadamente 2 minutos → Observe el cambio de color (azul claro → marrón → rojo ladrillo).
2. Detección de grasa
(1) Selección del material: cuanto mayor sea el contenido de grasa del tejido, mejor, como los cotiledones de maní.
(2) Paso: Hacer rodajas (cuanto más finas, mejor) y colocar las rodajas de maní más finas en el centro del portaobjetos de vidrio.
↓
? Tinción (deje caer 2 ~ 3 gotas de solución de tinte Sudan III en las secciones → la solución de tinte se absorberá después de 2 ~ 3 minutos → deje caer alcohol al 50 % para eliminar el color flotante → absorba el exceso de alcohol)
↓
Hacer una pieza (dejar caer 1~2 gotas de agua en la rebanada de material → cubrir con un cubreobjetos)
↓
Identificación por microscopio (iluminación debajo el microscopio → observación con microscopio de baja potencia → alta potencia Las partículas de grasa se tiñen de color rojo anaranjado cuando se observan al microscopio)
3. reactivo (Solución A: solución de NaOH 0,1 g/ml, Solución B: solución de CuSO4 0,01 g/ml).
(2) Paso: Agregue 2 ml → solución de muestra al tubo de ensayo → agregue 1 ml de solución de reactivo A de biuret, agite bien → agregue 4 gotas de solución de reactivo B de biuret, agite bien → observe el cambio de color (púrpura ).
El experimento 3 observa el flujo de cloroplastos y citoplasma.
1. Materiales: hojas frescas de musgo, hojas de alga negra u hojas de espinaca, carga temporal de células epiteliales bucales.
2. Principio: Cuando se observan al microscopio, los cloroplastos aparecen de color verde, esféricos u ovalados.
Las mitocondrias de las células epiteliales orales teñidas con la tinción de Janus Green son de color azul verdoso y el citoplasma es casi incoloro.
Se observó mitosis en el Experimento 4.
1. Materiales: puntas de raíces de cebolla (cebollas, ajos)
2 Pasos: (1) Cultivo de puntas de raíces de cebolla
(2) Producción cinematográfica.
Proceso de producción: disociación → enjuague → teñido → producción.
1. Disociación: líquido: ácido clorhídrico con una fracción másica de 15 y alcohol con una fracción volumétrica de 95. Finalidad: aislar células de los tejidos.
2. Enjuague: Enjuague con agua limpia durante unos 10 minutos. Propósito: Lavar el líquido para evitar una disociación excesiva y facilitar el teñido.
3. Tinción: teñir con solución de violeta de genciana (o solución de acetato carmín) durante 3 a 5 minutos. Propósito: teñir y observar los cromosomas.
4. Elaboración: Colocar la punta de la raíz sobre un portaobjetos de vidrio, añadir una gota de agua, triturar la punta de la raíz con unas pinzas, cubrirla con un cubreobjetos, añadir otro portaobjetos sobre el cubreobjetos y. luego use Presione suavemente la diapositiva con el pulgar. Propósito: Dispersar células para facilitar la observación.
(3) Observación
1. Primero, encuentre las células en el meristemo apical a baja potencia: las células son cuadradas, están bien dispuestas y algunas se están dividiendo.
2. Observación bajo microscopio de alta potencia: metafase → antes, después y después de la mitosis → interfase. (Preste atención a las características de la morfología y distribución de los cromosomas en las células en cada etapa). Entre ellos, el número de células en interfase es el mayor.
Consejos de prueba:
(1) ¿Por qué necesitamos enjuagar?
Lavar el ácido clorhídrico para facilitar el teñido.
(2)¿Cuál es la estructura más profundamente teñida en las células?
La estructura más teñida es la cromatina o los cromosomas.
(3) ¿Cuándo es el número máximo de células meristemáticas? ¿Por qué?
Intervalo; porque en el ciclo celular, el intervalo es el más largo.
(4) ¿Pueden las células observadas cambiar de metafase a anafase? ¿Por qué?
No, porque las células observadas son células muertas que han permanecido un tiempo determinado.
El experimento 5 comparó la eficiencia catalítica de la enzima y el Fe3
Consejos de prueba:
(1) ¿Por qué elegir hígado fresco?
Porque en el hígado viciado la actividad catalasa se reduce debido a la destrucción bacteriana.
(2) ¿El tubo de ensayo utilizado en este experimento debería ser más grueso o más delgado? ¿Por qué?
Debes elegir uno más grueso, porque es fácil que se formen una gran cantidad de burbujas en el tubo de ensayo más delgado, lo que afecta el reencendido del incienso sanitario.
(3) ¿Por qué elegir tejido de hígado animal para experimentos? ¿Se pueden sustituir los fluidos de molienda procedentes de otros tejidos animales y vegetales?
Debido a que el tejido hepático es rico en catalasa; otros tejidos animales y vegetales también contienen pequeñas cantidades de catalasa, por lo que se puede sustituir por esta.
(4) ¿Cuál de la misma masa de bloque hepático o líquido triturador de hígado tiene mejor efecto catalítico? ¿Por qué?
El líquido de molienda funciona bien; aumenta el área de contacto entre la catalasa y el peróxido de hidrógeno.
(5) Al gotear solución de molienda de hígado y solución de cloruro férrico, ¿se puede usar la siguiente pajita? ¿Por qué?
No utilizar * * * para evitar la mezcla de catalasa y cloruro férrico, lo que afectará a los resultados experimentales.
Experimento 6: Extracción y separación de pigmentos
1. Principio: Los pigmentos de los cloroplastos se pueden disolver en el disolvente orgánico acetona o etanol absoluto para extraer los pigmentos.
La solubilidad de cada pigmento en la solución cromatográfica es diferente, y la velocidad de difusión de la solución cromatográfica en el papel de filtro también es diferente: separación de pigmentos.
2 Pasos:
(1) Extraer y triturar los pigmentos
(2) Preparar tiras de papel de filtro
(3) Dibujar Líneas finas de filtrado: uniformes, rectas y finas, repetir varias veces.
(4) Separación de pigmentos: No dejar que las finas líneas del filtrado entren en contacto con el líquido cromatográfico.
(5) Registro de observación: los resultados de arriba a abajo, las tiras de papel de filtro son naranja (caroteno), amarillo (luteína), azul verdoso (clorofila a), amarillo verdoso (clorofila b) ).
Consejos de prueba:
(1) ¿Cuáles son los requisitos para las hojas? ¿Por qué quitar el pecíolo y el pulso espeso del tiempo?
Verde, preferiblemente verde oscuro. Porque el pecíolo y las venas tienen muy poco pigmento.
(2)¿Cuál es la función de la sílice? ¿Qué impacto tiene no agregar sílice en el experimento?
Para poder triturar por completo. Sin sílice, las bandas de filtrado y pigmento serán de color más claro.
(3)¿Cuál es la función de la acetona? ¿Qué puede reemplazar? ¿Se puede utilizar agua en su lugar?
Disolver pigmentos. En su lugar, se pueden utilizar disolventes orgánicos como el alcohol, pero no se puede utilizar agua porque el pigmento no es soluble en agua.
(4) ¿Cuál es la función del carbonato cálcico? ¿Qué impacto tiene no agregar carbonato de calcio en el experimento?
Protege los pigmentos y evita que los pigmentos de los cloroplastos se destruyan durante el proceso de trituración. Sin carbonato de calcio, el filtrado se volverá amarillo verdoso o marrón.
(5) ¿Por qué el pulido debe ser rápido? ¿Estás lleno? ¿Por qué utilizar tela en lugar de papel de filtro al filtrar? Muela rápidamente para evitar que se volatilice una gran cantidad de acetona; solo moliendo bien se puede disolver una gran cantidad de pigmento en acetona. Los pigmentos no pueden pasar a través del papel de filtro, pero sí a través de una tela de nailon.
(6) ¿Por qué es necesario cortar las dos esquinas del papel de filtro? Evite que el líquido cromatográfico se extienda demasiado rápido por ambos lados.
(7) ¿Por qué no puedo usar un bolígrafo o bolígrafo para dibujar líneas? Debido a que el agua para bolígrafo o el aceite para bolígrafo contienen otros pigmentos, afectarán los resultados de separación de los pigmentos.
(8) ¿Por qué la delgada línea de filtrado debe ser recta? ¿Por qué necesitas volver a dibujarlo varias veces?
Evita la superposición de las bandas de pigmento; aumenta la cantidad de pigmento para oscurecer el color de las bandas de pigmento.
(9) ¿Por qué la fina línea de filtrado no puede tocar el líquido cromatográfico?
Evita que los pigmentos se disuelvan en soluciones cromatográficas.
¿Por qué se separan los pigmentos de las tiras de papel de filtro?
Debido a las diferentes solubilidades de los pigmentos en las soluciones cromatográficas, sus velocidades de difusión en tiras de papel de filtro varían con las diferentes soluciones cromatográficas.
(11)¿Cuál es el pigmento más utilizado? Su solubilidad en soluciones cromatográficas es mayor que la de cualquier pigmento.
El pigmento con la banda más ancha es la clorofila a, que es más soluble que la clorofila b.
(12)¿Cuáles son los dos pigmentos con mayor distancia entre ellos en la tira de papel de filtro? Caroteno y luteína.
(13)¿Cuál es la banda de pigmento más estrecha? ¿Por qué?
La primera banda de pigmento, porque el caroteno tiene el menor contenido entre los cuatro pigmentos de los cloroplastos.
Experimento 7: ¿Observar la separación y recuperación de la pared plasmática?
1. Condiciones: diferencia de concentración entre la solución dentro y fuera de la célula, células vivas, vacuolas grandes.
2. Materiales: Células epidérmicas de hojas de escama de cebolla morada (con vacuolas moradas), solución de sacarosa con una concentración másica de 0,3g/mL, agua, etc.
3. Pasos: Hacer células epidérmicas de hojas de escamas de cebolla e instalarlas temporalmente → Observar → Dejar caer la solución de sacarosa en un lado del cubreobjetos y absorberla con papel absorbente en el otro lado → Observar (las vacuolas cambian de de grande a pequeño, color De superficial a profundo, la capa de protoplasma se separa de la pared celular) → gotee agua en un lado del cubreobjetos y absorba con papel absorbente en el otro lado → observe (separación y recuperación de la pared del plasma).
4. Conclusión: La concentración de líquido extracelular es mayor que la concentración de líquido intracelular, y las células pierden agua y plasmólisis.
Cuando la concentración del líquido extracelular es menor que la concentración del líquido intracelular, la pared absorbente de agua de la célula se separa y se recupera.
Consejos de prueba:
¿Por qué elegiste cebollas moradas? ¿Qué debo hacer si el morado es demasiado claro?
Las cebollas moradas tienen grandes vacuolas de color púrpura, lo que facilita observar cambios en el tamaño de las vacuolas; al estrechar la apertura se oscurece el campo de visión.
(2) ¿Se debe rasgar o pelar la piel de la cebolla? ¿Por qué?
La piel debe rasgarse pero no pelarse, porque la piel pelada suele ser demasiado gruesa.
(3) ¿Por qué las células vegetales sufren plasmólisis? ¿Se pueden utilizar células animales?
Cuando una célula pierde agua, su capa protoplásmica se vuelve más flexible que la pared celular. Las células animales no se separan entre sí porque no tienen pared celular.
(4) Cuando se produce la plasmólisis, ¿cambia el tamaño y el color de la vacuola? ¿Qué pasa con la recuperación?
Cuando la célula se separa de la pared plasmática, la vacuola se vuelve más pequeña y el color púrpura se intensifica. Cuando se restablece la separación de la pared citoplasmática, la vacuola se hace más grande y el color púrpura se vuelve más claro.
(5) ¿Cuál es la razón por la cual las células que se han desprendido de la plasmólisis no pueden recuperarse de la plasmólisis?
Las células han muerto (puede ser que la concentración de la solución externa sea demasiado alta, las células hayan perdido demasiada agua o el tiempo de separación de la pared plasmática sea demasiado largo).
(6) ¿Cómo mover la lente de carga antes de usar una lente de gran aumento?
Si deseas mover la imagen de un objeto superior en el campo de visión al centro del campo de visión, debes continuar moviendo la película hacia arriba. Si desea mover la imagen de un objeto en el lado izquierdo del campo de visión al centro del campo de visión, debe continuar moviendo la película hacia la izquierda, porque lo que ve en el campo de visión del El microscopio es una imagen invertida.
(7) ¿Cómo aclarar la imagen del objeto después de reemplazar la lente del objetivo de gran aumento? ¿Cómo cambiará el brillo del campo de visión? ¿Cómo iluminar?
Después de reemplazar la lente del objetivo de gran aumento, ajuste el tornillo de ajuste fino para aclarar la imagen del objeto; el campo de visión se oscurecerá. Ajuste la apertura o utilice un reflector cóncavo para iluminar su vista.
(8) ¿Cuál es la relación entre la longitud del ocular y del objetivo y el aumento?
Cuanto más largo sea el ocular, menor será el aumento; cuanto más larga sea la lente del objetivo, mayor será el aumento.
(9) ¿Cuál es la relación entre la distancia entre la lente del objetivo y el portaobjetos y el aumento después de que la imagen del objeto es clara?
Cuanto menor sea la distancia entre la lente del objetivo y la diapositiva, mayor será el aumento.
¿Cómo calcular el aumento total de (10)? ¿La amplificación se refiere específicamente a la amplificación de área o a la amplificación de longitud?
El aumento total es igual al producto del aumento del ocular y el aumento de la lente del objetivo; el aumento se refiere al aumento del largo o ancho de un objeto pequeño.
(11) ¿Cuál es la relación entre la ampliación y el tamaño y número de celdas en el campo de visión y el brillo del campo de visión?
Cuanto mayor sea el aumento, más grandes y menos serán las células en el campo de visión, y más oscuro será el campo de visión.
(12) Vuelva a colocar el ocular. Si el objeto extraño desaparece, el objeto extraño está en el ocular; reemplace la lente del objetivo. Si el objeto extraño desaparece, estará en la lente del objetivo y moverá el portaobjetos. Si el objeto extraño se mueve, estará en el tobogán.
(13) ¿Cómo utilizar el fenómeno de la plasmólisis para determinar la concentración del líquido de las células vegetales? ① Prepare una serie de soluciones de sacarosa con concentraciones variables de pequeñas a grandes; ② Utilice las soluciones anteriores de diferentes concentraciones para hacer una tableta temporal de células vegetales. ③ Utilice un microscopio para observar si las células vegetales tienen plasmólisis; La concentración de líquido celular en las plantas se encuentra entre las que no provocan plasmólisis y las que sí lo hacen.
Extracción bruta e identificación de ADN experimental
Consejos de prueba:
(1) ¿Se puede reemplazar la sangre de pollo con sangre de cerdo? ¿Por qué?
No, porque los glóbulos rojos de los mamíferos no tienen núcleo, por lo que no se puede extraer el ADN.
(2) ¿Por qué se debe añadir citrato de sodio a la sangre de pollo? ¿Por qué descartar el sobrenadante de células sanguíneas de pollo?
Evita la coagulación sanguínea porque el sobrenadante es plasma y no contiene células ni ADN.
(3) ¿Cómo explotar células? ¿Puedo usar solución salina?
Agregue agua destilada a las células sanguíneas para que absorban una gran cantidad de agua y exploten; no se puede usar solución salina normal porque las células sanguíneas no pueden absorber el agua del agua destilada.
(4) ¿Es mejor usar un vaso de vidrio o uno de plástico para este experimento? ¿Por qué?
Es mejor utilizar vasos de plástico porque los de vidrio tienden a absorber el ADN.
(5) ¿Cuántas capas de gasa hay para la tercera filtración? ¿Por qué?
Usar una capa de gasa por primera vez ayudará a que los materiales nucleares entren al filtrado a través de la gasa; usar varias capas de gasa por segunda vez puede evitar que los filamentos de ADN entren al filtrado a través de la gasa; Las capas de gasa por tercera vez no solo ayudarán a que el ADN penetre en la gasa y evitarán que otras impurezas penetren en la gasa.
(6) Si hay muy poco material viscoso en el experimento, ¿cuál es el motivo?
La primera vez que agrega muy poca agua destilada, las células no se rompen por completo; la segunda vez que agrega demasiada o muy poca agua destilada, se utilizan varias capas de gasa para la primera capa; de gasa se utiliza por segunda vez.
(7) ¿Cuál es el propósito de agregar agua destilada dos veces?
La primera vez es dejar que las células sanguíneas absorban agua y exploten; la segunda vez es reducir la concentración de cloruro de sodio, lo que es beneficioso para la precipitación del ADN.
(8) Al agitar la solución en el experimento, ¿por qué debería agitarse en una dirección?
Evita que las moléculas de ADN se dañen.
(9) ¿Cuáles son los métodos para aislar el ADN dos veces? ¿Cuál es el principio?
La primera vez es agregar agua destilada para reducir la concentración de cloruro de sodio y promover la precipitación del ADN; la segunda vez es agregar alcohol frío porque el ADN no es soluble en una solución alcohólica.
(10) ¿Cuáles son los líquidos que disuelven el ADN tres veces? ¿Cuál es el principio?
Utilice una solución de cloruro de sodio con una concentración de 2 mol/L para la primera y segunda vez, y utilice una solución de cloruro de sodio con una concentración de 0,01,5 mol/L (o 2 mol/L) para la tercera vez. El principio es que la solubilidad del ADN en cloruro de sodio cambia con la concentración de cloruro de sodio. Cuando la concentración de cloruro de sodio es 0,1,4 mol/L, la solubilidad del ADN es la más baja. La solución de cloruro de sodio de 2 mol/L y la solución de cloruro de sodio de 0,0,1,5 mol/L tienen una mayor solubilidad del ADN.
(11) ¿Por qué se utilizan dos tubos de ensayo para identificar el ADN? ¿Qué fenómenos hay?
Entre ellos, el tubo de ensayo sin ADN sirve como control.
La solución en este tubo de ensayo no cambia de color, pero la solución en el otro tubo de ensayo que contiene ADN se vuelve azul.
El experimento 9 explora el método de respiración de la levadura.
1. Principio: La levadura realiza respiración aeróbica en condiciones aeróbicas para producir dióxido de carbono y agua
La energía de c6h 12o 6 6 O2 6h2o 6→CO2 12h2o
La respiración anaeróbica en condiciones anaeróbicas produce alcohol y una pequeña cantidad de dióxido de carbono;
c6h 12o 6→2 C2 H5 oh 2 CO2 Un poco de energía.
2. Dispositivo: (ver libro de texto)
3. Detección: (1) Detección de producción de CO2: enturbia el agua de cal o hace que el bromotimol sea azul. La solución acuosa cambia de azul. a verde a amarillo.
(2) Detección de producción de alcohol: la solución de dicromato de potasio naranja reacciona con el alcohol en condiciones ácidas y se vuelve gris verdoso.
El experimento 10 observa la meiosis celular.
1. Objetivo: Observar la meiosis de los espermatocitos de langosta, aclarar la forma, posición y número de cromosomas en las diferentes etapas de la meiosis, y profundizar en nuestra comprensión del proceso de meiosis.
2. Meiosis fija de espermatocitos de langosta, microscopio.
3. Pasos del método:
(1) Observe la meiosis de los espermatocitos de langosta con bajo aumento e identifique los espermatocitos primarios, los espermatocitos secundarios y los espermatocitos.
(2) Primero, encuentre las células en la metafase y anafase de la primera meiosis y la metafase y anafase de la segunda meiosis con un aumento bajo, y luego observe cuidadosamente la forma y posición de los cromosomas con un aumento alto. magnificación y cantidad.
4. Discusión: (1) ¿Cómo determinar si una célula en el campo de visión está en la primera meiosis o en la segunda meiosis?
(2) ¿Cuál es la diferencia entre la primera meiosis y la segunda meiosis de las células en metafase? ¿Qué pasa con la etapa final?
Experimento 11 La baja temperatura induce la duplicación de los cromosomas
Principio: el tratamiento a baja temperatura de las células meristemáticas de las plantas puede inhibir la formación de husos, provocando que los cromosomas afectados sean arrastrados hacia los polos y Las células no pueden dividirse en dos células hijas, por lo que la cantidad de cromosomas en la célula vegetal cambia.
2. Pasos del método:
(1) Cuando a la cebolla le crezcan raíces adventicias de aproximadamente 1 cm, colóquela en la cámara de baja temperatura (4 ℃) del refrigerador para inducción durante 36 minutos. horas.
(2) Recorte aproximadamente 0,5 ~ 1 cm de la punta de la raíz inducida, sumérjala en la solución de Carnoy durante 0,5 ~ 1 h para fijar la forma de la célula y luego enjuague dos veces con alcohol al 95 %.
(3) Producción de envases: disociación → enjuague → teñido → producción.
(4) Observación y comparación: En el campo de visión hay tanto células diploides normales como células con un número de cromosomas alterado.
3. Discusión: La colchicina y la baja temperatura pueden inducir la duplicación del número de cromosomas. ¿Cuáles son las similitudes en principio entre los dos métodos?
El experimento 12 investiga enfermedades genéticas humanas comunes.
1. Requisitos: El grupo de encuesta debe ser lo suficientemente grande; seleccionar enfermedades genéticas de un solo gen con una alta tasa de incidencia en la población. Como daltonismo rojo-verde, albinismo, miopía alta (más de 600 grados), etc.
Métodos: Encuesta grupal, resumen de datos, cálculo unificado.
3. Fórmula de cálculo: La tasa de incidencia de una determinada enfermedad genética = ×100.
4. Discusión: ¿Los patrones de herencia y las tasas de incidencia de las enfermedades genéticas investigadas son consistentes con los datos relevantes y se analizan las razones?
El experimento 13 exploró el efecto de los reguladores del crecimiento de las plantas sobre el enraizamiento de esquejes.
1. Análogos de auxinas de uso común: NAA (ácido naftilacético), 2,4-D, IPA (ácido fenilacético), IBA (ácido indolbutírico), etc.
2. Método:
① Método de remojo: Remojar la base de los esquejes en la solución preparada hasta una profundidad de unos 3 cm y procesar durante varias horas o un día. Después del procesamiento, se puede cortar. Este método de tratamiento requiere una concentración de solución baja y se maneja mejor en un lugar fresco con alta humedad del aire.
(2) Método de remojo: Remoje la base de los esquejes en una solución de alta concentración (aproximadamente 5 segundos) a una profundidad de aproximadamente 65438 ± 0,5 cm
3. Experimento: primero se diseña un experimento con grandes gradientes de concentración para explorar y luego se diseñan experimentos detallados.
4. Varios principios de diseño experimental: ① Principio de variable única (solo la concentración de la solución es diferente (2) Principio equivalente (control de variables irrelevantes, es decir, otras condiciones son las mismas excepto la concentración de la solución); ); ③Principio de repetición (tratar de 3 a 5 ramas en cada concentración); ④Principio de control (control mutuo y control en blanco); ⑤Principio científico
El experimento 14 exploró los cambios dinámicos en la cantidad de levadura en el medio de cultivo.
1. Cultivo de levadura (temperatura, oxígeno, medio de cultivo): se puede utilizar medio de cultivo líquido.
2. Recuento: placa de recuento de células sanguíneas (cuadrado de 2 mm × 2 mm, espesor del medio de cultivo 0,1 mm)
3. Deducción y cálculo.
4. De acuerdo con La población de levadura se contó en 7 días y se dibujó la curva de crecimiento de la población de levadura; se especuló sobre los factores que afectan los cambios en la población de levadura;
Experimento 15 Estudio sobre la abundancia de taxones de animales del suelo
1 Suelen existir dos métodos estadísticos para la abundancia: el método de cálculo del registro y el método de observación visual.
Método de cálculo de registro: se refiere a contar directamente el número de individuos de varios grupos en un área determinada de la parcela de muestra. Generalmente se utiliza para comunidades con individuos grandes y población limitada.
Método de estimación visual: Estima el número de individuos por unidad de área en función de un nivel de redundancia predeterminado. Los métodos de clasificación y expresión de niveles incluyen: "mucho, mucho, mucho, muy poco, muy poco, muy poco", etc.
2. Diseñar tablas de recogida de datos y estadísticas, y analizar los datos recogidos.
Experimento 16 Encuesta de muestreo de densidad de población
Consejos para la prueba:
(1) ¿Cuál es el método de muestreo para la densidad de población?
En el entorno de vida de la población bajo investigación, se seleccionan al azar varios cuadrantes y la densidad de población promedio de todos los cuadrantes se toma como la densidad de población de la población.
(2) Para facilitar la investigación, al seleccionar los objetos de estudio, generalmente se deben seleccionar plantas monocotiledóneas o dicotiledóneas. ¿Por qué?
Generalmente se deben elegir plantas dicotiledóneas porque su número es fácil de contar.
(3) Al calcular el número de plantas en un cuadrante, ¿cómo se debe calcular si hay plantas que crecen justo en el borde?
Cuente únicamente el número de plantas en los lados adyacentes del cuadrado.
(4) En un área determinada, captura M animales por primera vez, márcalos y devuélvelos a sus lugares originales. Capture n animales por segunda vez, incluidos los individuos marcados con Y, y averigüe el número total de dichos animales en el área. MN/Y
(5) ¿Cuáles son las condiciones para aplicar el método de marcación y recaptura anterior? ① Los individuos marcados se distribuyen uniformemente entre toda la población encuestada, y los individuos marcados y los no marcados tienen la misma probabilidad de ser arrestados. ②Durante el período de investigación, ningún inmigrante entró ni salió. ③No hay nuevos nacimientos ni muertes.