Descripción del Problema:
Quiero conservar hongos filamentosos a temperatura ambiente por mucho tiempo. Me gustaría saber cuáles son los medios de cultivo más utilizados. ¡Gracias!
Análisis:
Se eliminaron mohos de batatas mohosas y manzanas rancias, se cultivaron en medio agar castillo de arena a 28 °C durante 2 o 3 días y se aislaron varias cepas de hongos. . Las cepas aisladas se sembraron nuevamente en la placa y se seleccionaron algunas esporas en la superficie de una sola colonia para cultivo en portaobjetos en medio de agar papa dextrosa. Después de cultivar a 28°C durante 2-3 días, las cepas aisladas se observaron bajo un microscopio de baja potencia y se identificaron a través de micelio y esporas. Se observaron conidias e hifas septadas agrupadas en las puntas de las conidias y se identificaron como Penicillium. Se observaron tres esporas curvas separadas en los conidióforos y pudieron identificarse como Curvularia spp. A través de mediciones fisiológicas y bioquímicas adicionales de la levadura, se observaron e identificaron esporas unicelulares en gemación como levadura.
Palabras clave: hongo; colonia; micelio; espora
1 Introducción
La palabra hongo proviene del vocablo latino "hongo". Ahora bien, el concepto de la palabra hongos incluye no sólo los hongos, sino que también representa un grupo bastante grande de organismos. ¿Qué son los hongos? Desde el punto de vista biológico, son un gran grupo de microorganismos eucariotas que no tienen raíces, hojas ni clorofila. No pueden producir alimentos a partir de materia inorgánica y dependen de organismos parásitos o saprofitos para sobrevivir. Sólo unos pocos son unicelulares, el resto son multicelulares. La mayoría de los hongos tienen filamentos ramificados o no ramificados y pueden reproducirse tanto sexual como asexualmente. Morfológicamente se puede dividir en levaduras, mohos y basidiomicetos.
De hecho, los hongos no son tan abstractos como parecen. Están en casi todas partes de nuestra vida diaria, y cada uno de nosotros ha estado expuesto a ellos y tiene distintos grados de conciencia perceptiva. Por ejemplo, levadura para preparar cerveza y bollos al vapor; especies de koji (Aspergillus y Rhizopus); Mucor y Monascus para hacer tofu fermentado; Aspergillus niger para fermentar deliciosos hongos shiitake, hongos, tremella y Hericium, la medicina tradicional china; , Cornezuelo, Cordyceps sinensis, Poria cocos y Ganoderma lucidum, además, los alimentos, la ropa, los utensilios, etc. se enmohecen debido a la humedad del trigo, etc., que causan enfermedades en los cultivos;
Los hongos y las bacterias son muy diferentes en tamaño, morfología, estructura y composición química. Los individuos unicelulares son varias o varias veces más grandes que las bacterias y tienen una pared celular, pero no contienen el peptidoglicano de la pared celular bacteriana. Algunos hongos cambian su morfología debido a cambios en las condiciones ambientales, fenómeno conocido como bifasicidad fúngica. Por ejemplo, Histoplasma pseudomallei adopta una forma similar a una levadura en los animales. Pero es filamentoso en un medio de cultivo artificial.
Los hongos no sólo tienen muchos tipos y cantidades, sino que además están ampliamente distribuidos, y están muy relacionados con la producción y la vida humana. Algunos micelios pueden causar enfermedades en humanos y animales, y algunos mohos también producen toxinas que dañan directa o indirectamente la salud humana. Por tanto, es muy importante comprender los métodos de cultivo y la morfología de los hongos.
En los últimos años, el diccionario micológico de anis Worth & bi***y ha introducido un sistema de clasificación. Este sistema considera que los hongos no pertenecen a plantas inferiores sino a un reino separado de hongos, dividido en la clase Mixomicetes y los hongos inferiores. Los hongos se dividen a su vez en flagelados, zigomicetos, basidiomicetos y deuteromicetos. En este estudio, se aislaron varios hongos de la naturaleza y se identificaron mediante clasificación fúngica.
2 Materiales
2.1 Materiales para enfermedades
Boniatos mohosos, manzanas podridas
2.2 Medios de cultivo
2.2 .1 Medio agar castillo de arena
Ingredientes: 10 gramos de peptona, 40 gramos de maltosa, 20 gramos de agar, 1000 ml de agua destilada.
2.2.2 Medio agar patata glucosa
Materiales: 200 gramos de patatas, 20 gramos de glucosa, 20 gramos de agar, 1000 ml de agua destilada.
2.2.3 Guardar medio agar.
Ingredientes: 10g de peptona, 20g de agar, 1000ml de agua destilada.
2.3 Equipo
Cuarto estéril, esterilizador portátil a vapor de alta presión, horno eléctrico, balanza, estante de hierro, placa de Petri esterilizada, matraz Erlenmeyer, embudo, tubo de ensayo, vaso de precipitados, punta de pegamento gotero, papel tornasol, asa de inoculación, lámpara de alcohol, probeta, varilla de vidrio, gasa, papel de filtro, tapón de tubo de ensayo, periódico, correa, etiqueta, incubadora, refrigerador, cubreobjetos, portaobjetos.
3 Métodos
3.1 Aislamiento y cultivo de hongos
3.1.1 Preparación experimental
Preparación del medio agar Sabo: utilizar balanza Pesar 10 g de peptona, 40 g de maltosa, 20 g de agar, usar una probeta graduada para medir 1000 ml de agua destilada, ponerlo en un vaso de precipitados, mezclar bien, calentar y fundir en un horno eléctrico, remover con una varilla de vidrio durante el proceso de calentamiento, ajustar la Valor de pH a 5,4 y verter en el cono en una botella, 115.
Limpieza de la sala estéril y caja de inoculación: Utilice bolas de algodón con alcohol para fregar todo el interior de la caja de inoculación, y coloque soportes para tubos de ensayo, lámparas de alcohol, etiquetas, asas de inoculación, bolígrafos, fósforos y otros elementos experimentales. instrumentos en la caja de inoculación. Encender la luz ultravioleta de la caja de inoculación y de la sala estéril por turno, y desinfectar con luz ultravioleta durante 20 minutos.
3.1.2 Aislamiento y cultivo de rayas
Realizar las siguientes operaciones bajo la llama de una lámpara de alcohol:
(1) Moho procedente de batatas y boniatos mohosos. manzanas rancias Después del aislamiento, se aislaron varias cepas de hongos cultivando a 28°C durante 2-3 días. Las cepas aisladas se sembraron nuevamente en la placa y se seleccionaron algunas esporas en la superficie de una sola colonia para cultivo en portaobjetos en medio de agar papa dextrosa. Después de cultivar a 28°C durante 2-3 días, las cepas aisladas se observaron bajo un microscopio de baja potencia y se identificaron a través de micelio y esporas.
(2)
Sostenga la placa de Petri con la mano izquierda y levante la tapa de la placa de Petri con el pulgar, el índice y el dedo medio izquierdos en un ángulo de aproximadamente 20 grados (cuanto menor sea el ángulo, mejor, para evitar contaminantes en el aire. Las bacterias entran en la placa de Petri y contaminan el medio de cultivo). Antes de dibujar, doble ligeramente el asa de inoculación para que quede paralelo a la superficie de agar en la placa de Petri y no corte el medio de cultivo.
(3)
Sostenga el asa de inoculación en la mano derecha e inocule el material mohoso en áreas de la placa de medio de agar sable. Después de marcar la zona anterior, quemar el asa de inoculación sobre una llama para esterilizarlo. Después de enfriar, dibuje la segunda área tocando la última o dos líneas de puntos del área anterior, y así sucesivamente, dibujando tres o cuatro áreas. A la hora de marcar, no es aconsejable repetir demasiado la línea antigua para evitar la formación de césped bacteriano.
(4) Después de la inoculación, marcar la fecha en el fondo del plato, invertir el plato y cultivar a 28°C durante 2-3 días.
(5) Utilice medio agar Sandcastle para rayar varias cepas aisladas obtenidas mediante aislamiento y cultivo nuevamente para obtener colonias individuales puras.
3.2 Cultivo en portaobjetos de hongos (cultivo pequeño)
3.2.1 Preparación experimental
Preparación de medio agar patata dextrosa: Lavar y pelar patatas frescas (Nota: No utilice patatas verdes o mohosas.) Cortar en rodajas o cubos del tamaño de una haba, pesar el peso necesario, verterlo en una olla, añadir 1000 ml de agua y hervir durante media hora aproximadamente hasta que las patatas estén crujientes pero no podridas. Usar cuatro capas Filtrar a través de una gasa, luego agregar el agar pesado al filtrado anterior, calentar a fuego lento para que se derrita lentamente y remover continuamente con una varilla de vidrio para evitar quemar el fondo de la olla. Luego agrega la solución de azúcar previamente disuelta en agua tibia y filtra con dos capas de gasa. Determine el valor del pH, ajústelo a 5,5 ~ 6,5 con 1 mol/L de NaOH o HCl y finalmente agregue agua hasta alcanzar los 1000 ml [2].
Limpieza del cuarto estéril y caja de inoculación: Igual que 2.1.1.
Preparación de agua esterilizada: Poner 5-6 ml de agua destilada en un tubo de ensayo pequeño de 10 ml, taparlo herméticamente con un tapón de algodón, envolverlo en papel de periódico y esterilizar en autoclave a 115 °C durante 20 minutos.
Funcionamiento del experimento
Tomar un trozo de papel de filtro circular con un diámetro de unos 7 cm, colocarlo en el fondo de una placa de 9 cm de diámetro, colocar una varilla de vidrio en forma de U encima y coloque un trozo limpio de portaobjetos y cubreobjetos, cubra con placas y esterilice [3].
Para evitar que el medio de cultivo se seque, dejar caer 3-4 ml de agua esterilizada en el papel de filtro, recoger las esporas del hongo, inocularlas en un tubo de ensayo lleno de agua esterilizada y agitar el tubo de ensayo para hacer una suspensión de esporas. Use un gotero estéril para absorber un poco de medio de cultivo sólido fundido esterilizado, colóquelo en el centro del portaobjetos en la placa de esterilización, use un asa de inoculación para inocular la suspensión de esporas en el medio de cultivo, luego cubra el portaobjetos y use suavemente unas pinzas para Presione y finalmente cubra la tableta.
Es decir, se convirtió en una cultura de presentación de diapositivas[4].
3.3 Preservación de hongos
3.3.1 Preparación del medio agar de conservación
Tomar 10g de peptona, 20g de agar y 1000ml de agua destilada y mezclar calentarlos uniformemente en un vaso de precipitados y fundirlos en un horno eléctrico, ajustar el valor de pH a 5,4, envasarlos en tubos de ensayo, esterilizarlos a 115°C durante 20 minutos y colocarlos sobre una superficie inclinada [5].
Limpieza de cuarto estéril y caja de inoculación: Igual que 2.1.1.
Operación experimental
Retire la placa que ha sido rayada, separada y cultivada a 28°C durante 2-3 días de la incubadora y colóquela en la habitación estéril para las siguientes operaciones: En el medio de la habitación estéril, cerca de la llama del alcohol, seleccione las colonias sospechosas del medio de cultivo en placa, use un asa de inoculación para raspar suavemente algunas esporas en la superficie, saque el asa de inoculación y extienda inmediatamente en el medio de cultivo inclinado sin tocar la inclinación y la pared del tubo, hasta que la parte inferior del bisel se doble desde la parte inferior del bisel hasta la parte superior del bisel, esterilice la boquilla con una llama y tape con algodón. Después de la inoculación, esterilice el asa de inoculación con una llama y baje la varilla de inoculación. Finalmente, marque la fecha en la pared del tubo inclinado, colóquelo en una incubadora a 28°C durante 2-3 días y luego guárdelo en un refrigerador a 4°C [6].
3.4 Identificación de levadura - prueba bioquímica
3.4.1 Experimento de fermentación del azúcar
Preparar una solución de azúcar al 2% (4% rafinosa) a partir de un 12,5% de frijol jugo de brotes) y envasado en tubos Duchenne. El tubo Duchenne es el recipiente principal para medir la fermentación. En la parte superior del pequeño tubo que puede fermentar ciertos azúcares deben verse una cierta cantidad de burbujas de CO2 [7]. Operaciones específicas: a. Dispensar el jugo de brotes de soja en tubos Duchenne, cada tubo es de 1,2 ml, 15 lbs, y esterilizar durante 15 minutos. b. Use agua destilada esterilizada para preparar una solución de azúcar al 10%, hierva durante 15 minutos, enfríe un poco, use una pajita esterilizada para absorber una cierta cantidad de solución de azúcar y distribúyala en tubos Duchenne hasta que la concentración de azúcar alcance el 2% (rafinosa 4). %), convirtiéndose en el medio básico para la fermentación del azúcar. c. Inocular la cepa recién cultivada que se va a identificar en el tubo de fermentación, cultivarla a 25-28 °C y observar los resultados todos los días. Generalmente se puede observar durante 2-3 días, y si no está fermentado o está débilmente fermentado se puede extender a 10 días. Debido a que la galactosidasa es una enzima adaptativa, la observación de galactosa fermentada se puede extender de 2 semanas a 1 mes [8].
3.4.2 Prueba de asimilación de la fuente de carbono
A. Preparación de la solución bacteriana: convierta la levadura en una suspensión bacteriana (1 ml de solución salina fisiológica estéril más un poco de levadura recién cultivada durante aproximadamente un círculo de inoculación). para formar una suspensión). b. Vierta la placa: Vierta toda la suspensión en 20 ml de medio de cultivo básico. Después de derretirla, enfríela a unos 45 °C. Viértala en una placa de Petri. Mezcle las bacterias en el medio de cultivo de manera uniforme y déjela reposar hasta que. solidifica. El recipiente se invierte durante varias horas a 28°C para evitar que la superficie se moje demasiado. c Muestreo: luego marque el nombre de la fuente de carbono en el fondo de la placa de Petri, use una cuchara de acero inoxidable esterilizada o una cuchara medicinal esterilizada y agregue un poco de azúcar (aproximadamente del tamaño de un grano de arroz) según la marca. Si el efecto no es evidente, añade más azúcar al día siguiente. d. Observación: Utilice la glucosa como control al observar los resultados. Generalmente, los resultados se obtienen después de cultivar a 25-28°C durante 1-2 días. Aquellos que puedan asimilarse formarán un círculo de crecimiento alrededor de la fuente de carbono agregada. Para levaduras de crecimiento lento o cuando se mide la asimilación de galactosa, se puede utilizar apropiadamente el método de cultivo líquido, es decir, la levadura se inocula en un medio líquido que contiene una determinada fuente de carbono y se cultiva a 25-28°C durante 65438±0- 2 semanas Utilizar el medio líquido que contiene glucosa como control para observar el crecimiento de la levadura para ver si se vuelve más turbia o forma anillos, islas, etc. Si es necesario, la observación puede ampliarse durante tres semanas [9].
4 Resultados y análisis
4.1 Observación de las características del cultivo de hongos
4.1.1 Rendimiento del crecimiento de los hongos en medio sólido
Crecimiento de levadura Rendimiento en medios sólidos: Las colonias de levadura en medios sólidos son aceitosas o cerosas, con una superficie lisa, húmeda y pegajosa. Algunas superficies son polvorientas, rugosas o arrugadas, con bordes, defectos o forma de hilos limpios. Los colores de las colonias son blanco lechoso, amarillo y rojo.
El crecimiento del moho en medio sólido: se cultivan diferentes mohos en medio sólido durante 2-3 días, y las colonias de moho aparecen esponjosas, floculentas y con forma de cuerda. El tamaño de la colonia varía según la especie, algunas se pueden expandir a medios de cultivo completamente sólidos y otras tienen ciertas limitaciones (menos de 1 a 2 cm de diámetro). Muchas esporas e hifas de hongos pueden producir pigmentos, lo que da como resultado diferentes colores en la superficie, la parte posterior de la colonia e incluso en el medio de cultivo, como amarillo, verde, negro y naranja.
4.1.2 Observación morfológica del cultivo en portaobjetos de hongos
Observación morfológica del cultivo en portaobjetos de levadura: similar a las células, en su mayoría células individuales, generalmente de forma ovalada, redonda o cilíndrica. Las células de levadura son más grandes que las células y algunas levaduras están conectadas con células hijas para formar pseudohifas. La levadura es principalmente amitótica, principalmente se divide y brota.
El examen microscópico del crecimiento del moho en pequeños cultivos reveló que las células estaban compuestas de muchas hifas ramificadas o no ramificadas, y muchas hifas estaban entrelazadas para formar micelio. Bajo el microscopio, las hifas son tubulares, en su mayoría septadas. Las hifas se dividen en múltiples células, cada célula contiene uno o más núcleos y las esporas son conidias.
4.2 Análisis de imágenes
4.2.1
Figura 1 Colonias productoras de Chrysanthemum chrysanthemum Figura 2 Micelio y esporas productoras de Chrysanthemum chrysanthemum.
La tasa de crecimiento es más rápida a 28°C, con colonias que crecen en 1-2 días y de 3-5cm de diámetro en 10-12 días. Primero blanco, luego azul o gris verdoso. La textura de la colonia es densa y esponjosa, con surcos radiales evidentes en la superficie de la colonia y un borde blanco. Las colonias son micelio agrupado sin olor especial y el reverso es de color amarillo brillante a amarillo oscuro (ver Figura 1).
Bajo el microscopio, a bajo aumento, las hifas son hifas septadas. Las hifas se dividen en múltiples células, formando cadenas de conidios ramificados en forma de escoba, bastante claros y dispersos. Conidios de forma ovalada (ver Figura 2).
Con base en la morfología de la colonia observada anteriormente y las características del cultivo del cultivo pequeño, se puede identificar como Chrysanthemum xanthomonas.
4.2.2
Figura 3 Colonia de Curvularia crescentus Figura 4 Hifas y esporas de Curvularia crescentus
El Penicillium crece a 28°C La velocidad no es tan rápida como el Penicillium Las colonias crecerán en 3 días. El color es gris verdoso oscuro y el dorso azul negro. La textura de las colonias era similar al algodón y las colonias eran micelio agrupado sin olor especial (los resultados se muestran en la Figura 3).
Bajo el microscopio, a bajo aumento, las hifas están separadas, multiramificadas y los conidios erguidos. Las esporas se adhirieron al conidióforo en forma de verticilo con tres curvas independientes (los resultados se muestran en la Figura 4).
Basado en la morfología de la colonia y las características de cultivo observadas en el pequeño cultivo mencionado anteriormente, se puede identificar como Curvularia crescentus del género Curvularia.
4.2.3
Figura 5 Colonia de levadura Figura 6 Células de levadura
Después de cultivar durante 3 días a 28 °C, la colonia era de color blanco lechoso, brillante, plano, con bordes Limpio, con una superficie húmeda y pegajosa. Las colonias se parecen a las colonias bacterianas, pero son más grandes, más gruesas y más redondas que las colonias bacterianas. Es opaco, huele a alcohol y se detecta fácilmente con la aguja de vacunación (ver Figura 5).
Bajo el microscopio, a bajo aumento, los modos reproductivos son en gemación, unicelulares, redondos, ovalados o en forma de salchicha (los resultados se muestran en la Figura 6).
Con base en las observaciones anteriores sobre la morfología de las colonias y las características del cultivo en cultivos pequeños, se puede identificar preliminarmente como levadura.
4.3 Determinación fisiológica y bioquímica de la levadura
Los resultados de la determinación se muestran en la siguiente tabla:
Glucosa Maltosa Galactosa Lactosa Sacarosa Melobiosa D-xilosa D- * **Azúcar L- ***Azúcar
Fermentación+++-\ \
Asimilación++- ++
Para aquellos inicialmente identificados como levadura de cerveza, las colonias se identificaron aún más utilizando Pruebas de fermentación y asimilación. Según la serie anterior de indicadores fisiológicos y bioquímicos, se puede identificar como levadura de cerveza.
5 Discusión
Con base en los experimentos realizados en este artículo y la información que consulté, las condiciones y características básicas de cultivo de los hongos, los métodos de reproducción de mohos y levaduras, y la importancia de la investigación experimental sobre hongos, la discusión es la siguiente:
Este estudio utilizó Sabao como medio de aislamiento y determinó las condiciones óptimas de cultivo para el hongo: glucosa 20g/l, agar 10g/l mientras que cultivo de papa; el medio es más eficaz en cultivos pequeños. Favorece la formación de esporas, por lo que se obtienen más hifas y esporas para evitar que las colonias se unan, los cultivos pequeños deben fotografiarse a tiempo después de observar las esporas y colocarse en el refrigerador para su uso posterior; ; el tiempo de cultivo en medio Sabouraud es de 2-3 días, 2-3 días en medio castillo de arena;
El tiempo de cultivo en cultivos pequeños es de 1-2 días.
La temperatura del cultivo es de 28+1℃. Este estudio tiene bajo costo, operación simple y alta eficiencia, y tiene cierta importancia orientadora para el aislamiento e identificación de hongos y el establecimiento de una biblioteca de cepas. En el futuro, es necesario seguir estudiando la expresión característica de diferentes hongos en medios de cultivo para poder identificar rápidamente los hongos.
Condiciones de cultivo de los hongos: Los hongos tienen bajos requerimientos nutricionales, son fáciles de cultivar y les gusta la acidez. El pH óptimo es de 5 a 10, la mayoría son bacterias psicrófilas y la temperatura óptima es de 22 a 28 °C. . Algunos hongos patógenos crecen bien a 37°C y algunos hongos crecen bien a 0°C. Necesita crecer en condiciones de alta humedad y la mayoría crece bien en condiciones de humedad relativa del 95% al 100%. Los hongos crecen más lentamente que las bacterias y tardan varios días en formar una colonia típica.
Características de las colonias de hongos: 1) Colonias de moho: compuestas por micelio y esporas, las colonias son más grandes que las bacterias y actinomicetos, y algunas incluso cubren toda la superficie del medio de cultivo, y las colonias son sueltas, esponjosas o floculantes. . Debido a que el micelio de la matriz del moho crece en el medio de cultivo, sus colonias no son fácilmente recogidas por la aguja de inoculación porque las esporas del moho tienen varios colores, la superficie de las colonias también muestra colores como amarillo, verde, cian, naranja; y negro. 2) Flora de levadura: compuesta por levaduras unicelulares. Su apariencia es similar a la de las bacterias. Tiene forma redonda, con una superficie húmeda, lisa y opaca, y el asa de inoculación la recoge fácilmente. La mayoría de las colonias son de color blanco lechoso y algunas son rojas, la superficie de las colonias cultivadas durante mucho tiempo se encoge; 3) Colonias similares a levaduras: la apariencia es similar a las colonias de levaduras, pero esta colonia puede crecer hacia abajo. Esto es causado por las pseudohifas formadas por la conexión entre las esporas en ciernes y las células madre que se extienden hacia el medio de cultivo, como las colonias de Candida albicans.
La levadura se reproduce mediante gemación, división y esporulación. Los mohos se reproducen asexualmente (esporas, artrosporas, clamidosporas, esporangios y conidias) y sexualmente (oosporas, zigosporas y ascosporas).
Además, es de gran importancia estudiar hongos que están estrechamente relacionados con la producción y la vida humana: 1) Utilización industrial de hongos: casi todos los tipos de sectores industriales de la vida humana, como alimentos, textiles. , curtido, fabricación de papel, medicina, lavado, piensos, fermentación del petróleo y utilización de tres residuos, etc. , pero los hongos también pueden provocar corrosión y moho en productos de sectores correspondientes, como alimentación, textiles, productos de cuero, aparatos eléctricos, etc. 2) Hongos y producción agrícola: Las enfermedades de las plantas causadas por hongos que invaden las plantas a menudo causan grandes pérdidas en los cultivos e incluso pérdida de cosechas, como la roya del trigo. Los hongos también tienen efectos beneficiosos sobre las plantas. Algunos hongos se combinan con las raíces de las plantas para formar micorrizas, formando un * * * complejo mutuamente beneficioso; al mismo tiempo, los hongos pueden secretar auxinas para promover el crecimiento de las plantas durante el proceso de crecimiento y desarrollo. 3) Hongos y tratamiento médico: los materiales medicinales fúngicos tienen una larga historia y se utilizan ampliamente, y muchos de ellos son materiales medicinales preciosos. Como Ganoderma lucidum, Cordyceps sinensis, Poria cocos, Monascus, Huangzhu, Divine Comedy, Hericium, hongos, etc. Los hongos hacen importantes contribuciones a la industria farmacéutica. Sin embargo, algunos hongos pueden causar enfermedades humanas. Estos hongos patógenos causan micosis superficiales y micosis profundas. Se debe reforzar el diagnóstico y la prevención de las micosis. 4) Hongos y bioingeniería: En los últimos años la investigación sobre la biología molecular de los hongos ha sido muy activa. Por ejemplo, la ingeniería genética basada en levaduras se utiliza principalmente para producir fármacos como la insulina humana y los interferones. Los logros de los hongos en la industria farmacéutica muestran el gran potencial de la bioingeniería.
Los experimentos incluidos en este artículo fueron en general exitosos y lograron resultados ideales. Sin embargo, debido a mi limitada experiencia en la investigación de hongos y a la falta de condiciones experimentales, me he visto limitado a la investigación básica sobre hongos y no he podido profundizar.
6 Conclusión
Los hongos tienen ventajas y desventajas para los humanos, y la gente les presta cada vez más atención. El estudio de los hongos es de gran importancia. En base a esto, este artículo realizó algunas investigaciones básicas sobre cepas individuales.
Este artículo comienza con la comprensión y el dominio de los conocimientos básicos de los hongos y luego realiza el cultivo y la identificación de hongos individuales. A través de experimentos, hemos dominado los procedimientos de cultivo e identificación de Chrysanthemum chrysanthemum, Curvularia crescentus y Saccharomyces cerevisiae, así como las características de cultivo correspondientes y los métodos de análisis de resultados de identificación, para prepararnos para futuras investigaciones micológicas en el futuro.
Aún quedan muchas áreas de hongos que no han sido descubiertas y utilizadas. Debemos seguir investigándolas, estudiándolas y resumiéndolas para diagnosticar enfermedades de cultivos y enfermedades humanas y animales, y para desarrollar la industria alimentaria, farmacéutica. industria, producción agrícola y atención médica y sanitaria, control de bioingeniería, etc. , aprovechar los recursos fúngicos de mi país, desarrollar y utilizar hongos beneficiosos y beneficiar a la humanidad.
Referencia
Bai et al. "Tecnología experimental microbiológica", Shandong University Press, 1987: 459.
Liao, Wang, et al. Micología, People's Medical Publishing House, 1989: 93.
[3] Zhang Zhuoran et al. Microbiología médica, Science Press, 1998: 102- 103
[4] "Common and Common Fungi" del Instituto de Microbiología, Academia China de Ciencias y otros, Science Press, 1973: 251.
[5] Li Yumei et al. Microbiología, China Medical Science and Technology Press, 1999: 45
Wen et al. "Modern Medical Microbiology", Shanghai Medical University Press, 1999. : 724 .
[7] Disalvo AF et al.: Penicillium marneffei causado por infección, Am
j Clinical Pathways 1973:
6(10):259< / p>
[8] Hall WJ: Endocarditis por Penicillium después de una cirugía a corazón abierto
Cirugía y reparación
Inserción de válvula, Am heart 1974:8(7):501
[9] Huang Xinan et al.: Penicilliosis aguda diseminada
Path 1963:3(9):167
Discurso de agradecimiento
Primero Sobre todo, me gustaría agradecer a mi escuela, profesores y compañeros por su cuidado y ayuda durante los últimos cuatro años. La realización de este artículo contó con la ayuda de muchas fuentes. Gracias a la escuela por brindarme espacio y materiales experimentales. Un agradecimiento especial a mis dos profesores en prácticas y a Ren Huiying por brindarme orientación sobre la dirección de la investigación y el diseño experimental. En la etapa final del artículo, me gustaría agradecerle por tomar fotografías de mis resultados experimentales e insertarlas en el artículo. Agradecemos al Sr. Zou Ling por su ayuda en el experimento. También me gustaría agradecer a mis compañeros que hacen prácticas conmigo por siempre resolver problemas y superar dificultades conmigo. Finalmente, me gustaría expresar nuevamente mis inquietudes e inquietudes durante mi pasantía.