Los experimentos son un punto de conocimiento requerido en la biología de la escuela secundaria. ¿Qué son los experimentos en los libros de texto de biología de la escuela secundaria? El siguiente es un experimento de un libro de texto de biología de la escuela secundaria que compilé para todos. ¡Espero que sea útil para todos! Resumen de los experimentos de un libro de texto de biología de la escuela secundaria
Experimento 1: lentes de bajo y alto aumento
p>1. Una lente de aumento o una lente de alta potencia tiene un campo de visión más amplio y un campo de visión más brillante.
¿Por qué una lente de baja potencia tiene un campo de visión amplio? pasa más luz y el aumento es pequeño; una lente de alta potencia tiene un campo de visión pequeño, pasa menos luz, pero aumenta el múltiplo.
2. ¿Por qué deberíamos primero observar claramente con una lente de bajo aumento, luego mover la imagen del objeto a ampliar y observar al centro del campo de visión y luego cambiar a una lente de alto aumento? para observación?
Si utilizamos un gran aumento directamente Al observar a través de un espejo, el objeto de observación a menudo no se encuentra porque no está dentro del campo de visión. Por lo tanto, primero debe observar claramente con una lente de baja potencia, mover la imagen del objeto que desea ampliar y observar al centro del campo de visión, y luego usar una lente de alta potencia para observar.
3. Después de usar el convertidor para girar la lente de alta potencia, ¿es posible girar el tornillo de enfoque aproximado?
No. Para observar con una lente de gran aumento, simplemente gire el tornillo de enfoque fino. Girar el tornillo de enfoque aproximado puede dañar fácilmente el portaobjetos de vidrio.
4. ¿Cuáles son los pasos y puntos clave del uso de una lente de alta potencia para la observación?
Respuesta: (1) Primero use una lente de baja potencia para observar, encuentre el imagen del objeto a observar y moverla al campo de visión central.
(2) Gire el convertidor, observe con una lente de alta potencia y gire suavemente el tornillo de enfoque fino hasta que el material sea claramente visible.
5. Resumen: Cuatro relaciones proporcionales
a. Longitud de la lente y aumento: Cuanto más larga sea la lente del objetivo, mayor será el aumento, y el ocular es todo lo contrario.
b. Aumento de la lente del objetivo y distancia desde el portaobjetos: cuanto mayor sea el aumento (longitud de la lente), más cercana será la distancia.
c. Ampliación y brillo del campo de visión: Cuanto mayor sea la ampliación, más oscuro será el campo de visión.
d. Ampliación y campo de visión: Cuanto mayor sea la ampliación, menor será el campo de visión.
Experimento 2: Detección de carbohidratos, grasas y proteínas en tejidos biológicos
1. Principio experimental
Ciertos reactivos químicos pueden convertir materia orgánica relevante en tejidos biológicos en compuestos que producen reacciones de color específicas.
1. Los azúcares reductores solubles (como glucosa, fructosa, maltosa) reaccionan con el reactivo de Fehling para producir un precipitado de Cu 2O de color rojo ladrillo.
Glucosa Cu(OH)2 Ácido glucónico Cu 2O? (rojo ladrillo) H 2O, es decir, el Cu(OH)2 se reduce a Cu 2O, y la glucosa se oxida a ácido glucónico.
2. La grasa se puede teñir de naranja con tinte Sudán III (o de rojo con tinte Sudán IV). El almidón se vuelve azul cuando se expone al yodo.
3. La proteína reacciona con el reactivo de biuret para producir una reacción de color púrpura. (Las moléculas de proteína contienen muchos enlaces peptídicos, que pueden reaccionar con Cu2 en el reactivo de biuret en una solución alcalina de NaOH para producir una reacción púrpura).
2. Materiales experimentales
1. En el experimento de identificación de azúcares reductores solubles, se deben seleccionar tejidos vegetales con alto contenido de azúcar y color blanco, como manzanas y peras. (Debido a que el color del tejido es más claro, es más fácil de observar).
2. Haz un experimento de identificación de grasa. Se deben seleccionar semillas ricas en grasas, siendo las mejores las de maní. Generalmente se deben remojar durante 3 a 4 horas antes del experimento (también se pueden usar semillas de ricino).
3. Para los experimentos de identificación de proteínas, se pueden utilizar semillas de soja o claras de huevo ricas en proteínas.
3. Precauciones experimentales
1. Identificación de azúcares solubles
a. La solución A y la solución B que componen el reactivo de Fehling deben prepararse y almacenarse por separado. , mezcle cantidades iguales de los líquidos A y B en el reactivo de Fehling antes de usarlo; el reactivo de Fehling es muy inestable cuando los líquidos A y B se mezclan y almacenan, el Cu (OH) 2 generado se descompone en CuO negro y agua. p> b. No agregue el líquido A y el líquido B al líquido de muestra de tejido de manzana para realizar la prueba. Cuando las soluciones A y B se añaden por separado, pueden reaccionar con el fluido de la muestra de tejido y no se generará Cu (OH) 2.
2. Identificación de proteínas
a. La solución A y la solución B también deben prepararse y almacenarse por separado. Al identificar, agregue primero la solución A y luego la solución B; agregue primero la solución de NaOH para proporcionar un ambiente alcalino para la reacción entre Cu2 y la proteína. Mezclar los líquidos A y B o agregarlos al mismo tiempo hará que el Cu2 se convierta en precipitación de Cu (OH) 2 y se vuelva ineficaz.
b. No agregue demasiada solución de CuSO4; de lo contrario, el color azul del CuSO4 cubrirá el color real de la reacción.
c.La clara de huevo debe diluirse primero; si la dilución no es suficiente, la clara de huevo se pegará a la pared del tubo de ensayo durante el experimento y se pegará a la pared interna de la prueba. tubo después de reaccionar con el reactivo de biuret, lo que dificulta que la reacción se complete, y los tubos de ensayo tampoco son fáciles de limpiar.
3. Diferencia entre el reactivo de Fehling y el reactivo de biuret:
Prueba 3: Observar la distribución del ADN y el ARN en las células
Principio experimental:
>1. Las tinciones de verde de metilo y rojo de pirrol tienen diferentes afinidades por el ADN y el ARN. El verde de metilo hace que el ADN parezca verde y el rojo de pirrol hace que el ARN parezca rojo. La tinción de células con una tinción mixta de verde de metilo y rojo pirrol puede mostrar la distribución del ADN y el ARN en las células.
2. El ácido clorhídrico puede cambiar la permeabilidad de la membrana celular, acelerar la entrada del tinte en las células y al mismo tiempo separar el ADN y las proteínas de los cromosomas, lo que favorece la combinación del ADN. y tinte.
Experimento 4: Experimente el método de preparación de membranas celulares
Materiales experimentales: Los glóbulos rojos maduros de humanos y otros mamíferos no tienen núcleos ni numerosos orgánulos. Sólo materiales experimentales Membrana celular Una estructura de membrana.
Experimento 5: Utiliza un microscopio de alta potencia para observar mitocondrias y cloroplastos
1. Principio experimental
1. Base para la identificación de los cloroplastos: los cloroplastos son verdes y planas, elípticas o esféricas.
2. Base para identificar las mitocondrias: Las mitocondrias tienen varias formas, incluidas las de bastón corto, esféricas, lineales, de mancuerna, etc.
3. El tinte verde Jenna es un tinte de células vivas que tiñe específicamente las mitocondrias, lo que puede hacer que las mitocondrias de las células vivas aparezcan de color azul verdoso.
2. Materiales experimentales
Al observar cloroplastos, elija: hojas de musgos y hojas de algas negras. La razón para seleccionar estos materiales es que las hojas son delgadas y pequeñas, los cloroplastos son transparentes y los folíolos enteros se pueden cortar directamente, por lo que son los materiales de primera elección para los experimentos.
Si se utilizan hojas de espinaca como material experimental, se debe tomar la epidermis inferior de las hojas de espinaca con un poco de mesófilo. Porque las células epidérmicas no contienen cloroplastos.
3. Discusión
1. ¿Son estacionarios los cloroplastos en la matriz citoplasmática?
Respuesta: No. Los cloroplastos con forma de elipsoide pueden moverse bajo diferentes condiciones de iluminación. Este movimiento puede cambiar la dirección del elipsoide en cualquier momento, lo que permite que los cloroplastos reciban más luz sin ser quemados por una luz fuerte.
2. ¿Cuál es la relación entre la forma y distribución de los cloroplastos y la función de los cloroplastos?
Respuesta: La forma y distribución de los cloroplastos son propicias para recibir luz y completar la fotosíntesis. Por ejemplo, los cloroplastos cambian de dirección bajo diferentes condiciones de luz.
Otro ejemplo es que hay más cloroplastos en las células del mesófilo del haz de la hoja que del envés, por lo que pueden recibir más luz.
Experimento 6: Observación de la absorción y pérdida de agua en células vegetales
1. Principio experimental:
1. Principio de plasmólisis: Cuando la concentración de líquido celular es menor que Cuando aumenta la concentración de la solución externa, las células perderán agua por ósmosis y el agua del líquido celular ingresará a la solución a través de la capa de protoplasma, lo que hará que tanto la pared celular como la capa de protoplasma se reduzcan a un cierto medida. Dado que la capa de protoplasma es más contráctil que la pared celular, cuando la célula continúa perdiendo agua, la capa de protoplasma se separará de la pared celular.
2. El principio de plasmólisis y recuperación: cuando la concentración del líquido celular es mayor que la concentración de la solución externa, la célula absorberá agua por ósmosis y el agua de la solución externa entrará. El líquido celular a través de la capa de protoplasma, toda la capa de protoplasma volverá lentamente a su estado original y se adherirá a la pared celular, lo que hará que las células vegetales experimenten plasmólisis y recuperación gradualmente.
2. Materiales y métodos experimentales:
La piel exterior de las hojas de escamas de cebolla morada. Debido a que las vacuolas son de color púrpura, son fáciles de observar. En su lugar también se puede utilizar Spirogyra. Solución de sacarosa de 0,3 g/ml. El uso de solución de sacarosa como agente de plasmólisis no tiene ningún efecto tóxico sobre las células.
Método de plasmólisis (método de drenaje): Realizar trozos temporales de la piel exterior de las hojas de escamas de cebolla. Luego, deje caer una solución de sacarosa de 0,3 g/ml de un lado del cubreobjetos y absorba con papel absorbente en el otro lado del cubreobjetos. Repita esto varias veces.
Método de recuperación de plasmólisis: en su lugar, utilice un experimento con agua clara.
3. Discusión
1. Si las células epidérmicas anteriores se infiltran en una solución de sacarosa con la misma concentración que la solución celular, ¿qué pasará con estas células epidérmicas? Las células epidérmicas permanecerán en su estado original, porque la concentración del líquido celular es igual a la concentración de la solución externa.
2. Cuando hay una diferencia de concentración entre las soluciones en ambos lados de la membrana de los glóbulos rojos, ¿los glóbulos rojos sufrirán plasmólisis?
Respuesta: No. Porque los glóbulos rojos no tienen paredes celulares.
El experimento 7 compara la descomposición del peróxido de hidrógeno en diferentes condiciones.
1. Principio experimental
El extracto de hígado fresco contiene catalasa. Tanto la hidrogenasa como el Fe3 pueden catalizar la descomposición. de H2O2 para liberar O2. Se ha calculado que, en comparación con la solución de FeCl3 con una fracción de masa de 3,5 y el líquido de molienda del hígado con una fracción de masa de 20, el número de Fe3 en cada gota de solución de FeCl3 es aproximadamente 250.000 veces el número de moléculas de catalasa en cada gota. de líquido triturador de hígado.
2. Precauciones para el experimento
1. No permita que el H2O2 entre en contacto con la piel, el H2O2 es corrosivo hasta cierto punto.
2. No utilice el El mismo gotero, porque la enzima es muy eficiente. Si se mezcla una pequeña cantidad de catalasa con la solución de FeCl3 caída, afectará la precisión del experimento.
3. El líquido de trituración del hígado debe estar fresco, porque. La catalasa es una proteína. Si se deja por mucho tiempo, las bacterias pueden descomponerla, lo que reducirá la cantidad de moléculas de enzima en el tejido hepático y reducirá su actividad.
4. Triture bien el hígado. Destruye la estructura de las células del hígado y libera enzimas en las células, aumentando el área de contacto entre la enzima y el sustrato.
Experimento 8 Condiciones que afectan la actividad enzimática
Principio experimental:
1. Cuando el almidón se encuentra con el yodo, forma un complejo azul púrpura.
2. La amilasa puede hidrolizar gradualmente el almidón en maltosa y la glucosa y la maltosa no desarrollan color cuando se exponen al yodo.
Nota: la temperatura óptima de la a-amilasa disponible comercialmente es de aproximadamente 600 °C.
El experimento 9 explora el método respiratorio de la levadura.
Principio experimental:
1. La levadura es un hongo unicelular que puede sobrevivir tanto en condiciones aeróbicas como anaeróbicas. Es una bacteria anaeróbica facultativa, por lo que es fácil de utilizar para estudiar diferentes formas de respiración celular. Ecuación (omitida)
2. El CO2 puede enturbiar el agua de cal clara y también puede hacer que la solución acuosa de azul de bromotimol cambie de azul a verde y luego a amarillo. La producción de CO2 del cultivo de levadura se puede detectar en función de la turbidez del agua de cal o del tiempo que la solución acuosa de azul de bromotimol se vuelve amarilla.
3. La solución de dicromato de potasio naranja reacciona químicamente con etanol (alcohol) en condiciones ácidas y se vuelve gris verdoso en condiciones ácidas.
Notas
Método para aumentar el oxígeno en el agua: Utilice una pelota de goma o una bomba de aire para introducir aire, y utilice una solución de NaOH para eliminar el CO2 del aire.
Experimento 10: Extracción y separación de pigmentos de cloroplastos
1. Principios y métodos experimentales
1. Principio de extracción de pigmentos: Los pigmentos en los cloroplastos son sustancias orgánicas, insolubles en agua y fácilmente solubles en Disolventes orgánicos como la acetona. Método de extracción: utilice acetona, etanol, etc. para extraer pigmentos.
2. Principio de separación de pigmentos: La cromatografía líquida es un disolvente orgánico altamente liposoluble. La solubilidad de los pigmentos de cloroplasto en el líquido de cromatografía es diferente. Aquellos con alta solubilidad se difundirán rápidamente en el papel de filtro con el líquido de cromatografía, mientras que aquellos con baja solubilidad se difundirán lentamente con el líquido de cromatografía en el papel de filtro. Método de separación: cromatografía en papel. Utilice una pipeta capilar para dibujar una línea delgada de filtrado a lo largo de la línea del lápiz en el extremo inferior de la tira de papel de filtro. Espere a que el filtrado se seque y luego dibuje una o dos veces. Luego inserte la tira de papel de filtro en el líquido de cromatografía. la delgada línea de filtrado no puede entrar en contacto con el líquido de cromatografía). Resultados de la separación: Aparecen cuatro bandas de pigmento de arriba a abajo en la tira de papel de filtro: naranja (la más estrecha, caroteno), amarilla (luteína), azul verdosa (la más ancha, clorofila a) y amarillo verdoso (clorofila b). La distancia entre el caroteno y la luteína es la más grande y la distancia entre la clorofila a y la clorofila b es la más pequeña.
2. Precauciones experimentales
1. Añade SiO2 para moler más completamente.
2. Añadir CaCO3 para evitar que la clorofila se dañe durante la molienda. Debido a que la clorofila contiene magnesio, puede ser reemplazada por hidrógeno producido por ácidos orgánicos en el líquido celular para formar feofitina, que puede neutralizar los ácidos orgánicos liberados por la destrucción de las vacuolas y evitar la destrucción de los cloroplastos.
3. Añadir etanol absoluto porque los pigmentos del cloroplasto son fácilmente solubles en disolventes orgánicos como el etanol absoluto.
3. Discusión experimental:
1. ¿Por qué la delgada línea de filtrado en la tira de papel de filtro no puede tocar la solución de cromatografía?
Respuesta: Activado? la tira de papel de filtro Si la delgada línea de filtrado toca el líquido de cromatografía, los pigmentos del cloroplasto en el papel de filtro se disolverán en el líquido de cromatografía y el experimento fallará.
2. ¿Cuál es la clave para extraer y separar los pigmentos del cloroplasto?
Respuesta: La clave para extraer los pigmentos del cloroplasto es: ① Las hojas deben estar frescas y de color verde oscuro; debe ser rápido y suficiente; ③Después de recolectar el filtrado, tape bien la boca del tubo de ensayo con un tapón de algodón a tiempo para evitar que el filtrado se evapore. La clave para separar los pigmentos del cloroplasto es: primero, la línea delgada del filtrado debe ser delgada y recta, y el dibujo debe repetirse varias veces; segundo, el líquido cromatográfico no debe llegar a la línea del filtrado;